运动生理学教学网站  
详细内容

木枣多糖抗疲劳组分对游泳小鼠糖代谢的影响

[日期:2007-06-22] 来源:  作者:ydslx [字体: ]

摘要 目的:从木枣多糖中寻找和筛选抗疲劳组分,探讨其对运动机体的作用机制。方法:用不同方法从木枣中提取得到两种粗多糖,以雄性小鼠为实验对象,采用一次性力竭试验,筛选效果最强组分;又建立递增强度游泳训练模型,对小鼠灌服该多糖溶液,四周后测定血糖、肌糖原、肝糖原、血乳酸等生化指标。结果表明:服用一定剂量酶提木枣多糖能提高肌糖原和肝糖原含量,减少力竭运动后血乳酸的堆积,维持血糖恒定。结论:说明酶法提取木枣多糖能够延缓机体运动性疲劳的产生。

关键词:酶法提取;木枣多糖;游泳;糖代谢;

植物多糖是一种广泛存在于植物中的天然大分子物质,由于其独特的功能,近年来被广泛的应用于临床来提高机体的免疫能力,用于增强机体的抗氧化能力,和调节机体的糖代谢。木枣是枣类中的一大类,也有人称之为红枣或大枣,它主要产于陕西,俗有“陕北大红枣”的美称。由于其适应性强,栽培技术简单,所以被陕北等地广泛种植。木枣中含有丰富的蛋白质、氨基酸、维生素、生物碱、皂甙、矿物质及多糖(Jujube Polysaccharide)等。红枣中的多糖成分可以提高衰老模型小鼠SODCATGSP-Px活力,对大、小鼠血虚模型、气血双虚模型有较好改善作用,并具有抗溃疡作用[1];大枣多糖具有增强巨噬细胞吞噬功能、促进淋巴细胞转换、抗衰老、补血及保肝的作用[2]。本试验采用游泳模型,研究木枣多糖对小鼠机体糖代谢以及运动能力的影响,为进一步开发与利用陕北木枣、开发新型运动补剂提供理论依据与思路。

1材料和方法

1.1实验材料及动物

木枣购于陕西省吴堡县,采摘期为十月。木枣多糖提取过程在本实验室进行。采用两种常规提取方法:热水浸提法、加纤维素酶提取法,工艺的主要步骤:木枣→破碎过60目筛→80%乙醇除单糖、苷类等干扰成份→渣用热水浸提→离心取上清液,浓缩至小体积→终浓度为80%乙醇沉淀→无水乙醇、丙酮、乙醚洗涤沉淀→冷冻干燥得水提多糖JP1;热水浸提时加一定比例的纤维素酶,其余步骤同前,得酶提多糖JP2。硫酸-苯酚法检测JP1多糖含量为76.4%,JP2多糖含量为82.6%;

试验动物为健康昆明种雄性小鼠160只,两月龄,体重22-26克,从陕西省医药研究所实验动物饲养中心购入,同时购入基本饲养。适应行饲养一周后进行实验。

1.2试验模型与方案

1.2.1木枣多糖筛选模型

两种糖用时配成等浓度的多糖水溶液,随用随配。小鼠随机分为三组:对照组、JP1组、 JP2组,每组10只。JP1组、 JP2组灌服多糖液一周,剂量选择100 mg.kg-1.d-1(按多糖含量计算),对照组同样灌服等体积生理盐水。一周后进行一次性游泳力竭实验,进行筛选。

1.2.2运动模型

选择效果明显的木枣多糖进一步试验,选择100 mg.kg-1.d-1为中剂量,并按倍数关系设定高低两个剂量:50mg.kg-1.d-1200 mg.kg-1.d-1,小鼠分为4组,每组30只:运动模型对照组、低剂量运动组、中剂量运动组、高剂量运动组。动物饲养室温度20-26℃,湿度为43%-50%,光照随同自然光变化,各组自由摄食饮水;每天下午五点灌胃相应的木枣多糖液;运动对照组灌胃相同体积的生理盐水,各组在水池中进行游泳训练,训练模型参照文献[3],并适当改动,每天灌胃后三小时进行游泳,每周训练6天,周末休息,运动量安排见表1;水池长65cm、宽50cm、深50cm,加水泵制造成循环水,温度控制于30-35℃;第四周末,每组随机抽取10只运动前处死测定相关指标,其余小鼠力竭后随机平均分为即刻处死组和恢复3小时组,恢复组力竭完再灌胃相关剂量木枣多糖液,3小时后处死,测定相关指标。力竭实验采用负重方式,即鼠尾系质量为鼠重5%铅丝,强迫游泳至力竭。判断标准为:小鼠沉入水面8s无力游出。立刻捞出记录游泳时间。

1 游泳小鼠运动量方案   (单位:min)

Table 1 List of Exercise Amount of Mice (Unit: min)

天数

第一周

第二周

第三周

第四周

第一天

10

65

95

120

第二天

20

70

100

120

第三天

30

75

105

120

第四天

40

80

110

120

第五天

50

85

115

120

第六天

60

90

120

运动前测定、力竭后测定、恢复测定

1.3样品制备与测试方法

血清制备:各组小鼠分别轻度麻醉,眼眶采血,在室温下凝固,然后用离心机离心2号角速度2500-3000rpm.min-1离心15分钟,取血清;用ACE全自动化分析仪(美国)低温测血糖、血乳酸;组织匀浆制备:取股四头肌、肝脏,制备组织匀浆,质量体积比为10%,待测肌糖原和肝糖原。血糖、肌糖原、肝糖原及血乳酸含量采用南京建成生物制剂公司的试剂盒测定,各项操作严格按照试剂盒上的说明进行。

1.4数据处理

EXCEL对所测试数据进行处理,结果以平均数±标准差(X±SD)表示,数据进行组间t检验。

2 实验结果

2.1木枣多糖对各组小鼠力竭时间的影响(见表2

2 木枣多糖组分对小鼠力竭时间的影响

Table 2 Effect of Jujube Polysaccharide Composition on Exhaust Time of Mice

组别

n

力竭时间(min

延长百分率

对照组

JP1

JP2

10

10

10

138.31±13.69

142.66±12.52

162.32±21.42*

3.2%

17.4%

*:P<0 .05,与对照组相比较.

2显示:JP2鼠力竭时间显著长于运动对照组,延长百分率分别为17.4%JP1组小鼠力竭时间较运动对照组差别不明显,提示JP2具有提高小鼠运动时间及抗疲劳的作用,可对其进一步进行研究,探讨其抗疲劳的可能机制。

2.2 服用不同剂量JP2对各组小鼠肌糖原、肝糖原含量的影响(见表3

3显示:低剂量运动组肌糖原含量在运动后恢复3小时与运动对照组相比较,具有明显的升高,同时低剂量运动组肝糖原在运动前与运动对照组相比较,具有明显的升高,其余情况无统计学意义;但中剂量运动组与高剂量运动组鼠不管是运动前、运动后即刻、还是运动后3小时恢复,肌糖原、肝糖原含量均显著高于运动对照组,提示木枣多糖在一定剂量下具有提高小鼠糖原储备的作用。

 

3 JP2对各组小鼠肌糖原、肝糖原含量的影响

Table 3 Effect of JP2 on Content of muscle sugar and liver sugar of Mice

组别(n=30)

肌糖原(g/100g)

肝糖原(g/100g)

运动前

运动即刻

运动恢复

运动前

运动即刻

运动恢复

对照组

0.42±0.14

0.38±0.08

0.41±0.11

1.76±0.15

1.54±0.82

1.63±0.24

低剂量组

0.46±0.13

0.42±0.11

0.45±0.13*

1.97±0.37*

1.62±0.45

1.77±0.32

中剂量组

0.51±0.18*

0.44±0.16*

0.48±0.06*

2.16±0.13*

1.95±0.31*

2.15±0.24*

高剂量组

0.58±0.11**

0.46±0.06*

0.54±0.14*

2.21±0.29**

1.97±0.16*

2.19±0.12**

*:P<0 .05,与对照组相比较;**: P<0 .01,与对照组相比较.

2.3服用不同剂量JP2对游泳小鼠运动前后糖原储备和恢复的影响(见表4

4 JP2对游泳小鼠运动前后糖原储备和恢复的影响

Table 4 Effect of JP2 on Content and recover of sugar about Mice after training

组别

糖原增长率(%)

 

糖原恢复率(mg/100g.min

肌糖原

肝糖原

肌糖原

肝糖原

对照组

0

0

 

0.17

0.5

低剂量组

9.52

11.93

 

0.17

0.83

中剂量组

21.43

22.73

 

0.22

1.11

高剂量组

38.10

25.57

 

0.44

1.22

注:糖原储备增长率(%)=(游泳前各剂量组糖原含量-游泳前对照组糖原含量)/游泳前对照组糖原含量.100%;糖原恢复率(mg/100g.min=(游泳后3小时糖原含量-游泳后即刻糖原含量)/180分钟

4显示:各加药组肌糖原、肝糖原含量增长率与运动对照组相比较,具有明显的升高,中高剂量运动组肌糖原、肝糖原含量增长率达20%;从糖原恢复率的变化情况来看,各剂量运动组均超过运动对照组。

2.4服用不同剂量JP2对各组游泳小鼠血糖含量的影响(见表5)

5 JP2对各组小鼠血糖含量的影响 单位:mmol/L

Table 5 Effect of JP2 on Content of blood glucose of Mice (Unit: mmol/L)

组别

运动前

运动即刻

运动恢复

对照组(n=30)

5.62±1.32

3.86±0.14

4.78±1.24

低剂量组(n=30)

5.89±1.45

      3.97±0.32

5.06±0.87

中剂量组(n=30)

5.85±0.79

4.26±0.13

5.15±1.21

高剂量组(n=30)

5.72±1.21

4.52±0.34

5.27±0.63*

*:P<0 .05,与对照组相比较;:P<0 .05,与运动前相比较.

由表5可知: 运动后对照组、低剂量组小鼠血糖较运动前有显著性下降,运动后血糖恢复情况显示,只有高剂量组与对照组有显著性升高的差异;其余各组与运动前、运动后相比较,都没有显著性差异(P0.05)。

2.5服用不同剂量JP2对游泳小鼠血乳酸含量的影响(见表6)

6 JP2对各组小鼠血乳酸含量的影响(单位:mmol/L)

Table 6 Influence of JP2 on Content of Blood Lactic Acid of Mice (Unit: mmol/L)

组别

运动前mmol/L

运动即刻mmol/L

运动恢复mmol/L

血乳酸恢复速度(mmol/L.min-1

对照组

2.11±0.65

9.31±2.14△△

2.62±1.13

0.037

低剂量组

2.02±1.04

8.62±1.33*△△

2.88±0.51

0.039

中剂量组

2.21±0.74

8.25±1.42*△△

2.86±1.06

0.030

高剂量组

2.18±0.65

8.11±1.62**△△

2.52±0.86

0.031

注:血乳酸指数(mmol/L.min-1=运动后即刻血乳酸(mmol/L/运动时间(min

*:P<0 .05,与对照组相比较;**: P<0 .01,与对照组相比较. :P<0 .05,与运动前相比较;△△:P<0 .01,与运动前相比较.   

6结果显示:运动后即刻,各组游泳小鼠较运动前血乳酸浓度成呈极显著性增加(P<0 .01);各剂量组小鼠血乳酸浓度较对照组有不同程度的降低(P<0 .05P<0 .01),各组运动恢复后与运动前的血乳酸浓度对比无显著性差异,各组血乳酸恢复速度之间的对比也无统计学意义。

3   讨论

通过纤维素酶法对木枣多糖进行提取,能充分打碎植物细胞壁,使植物细胞胞内多糖浸出,而水提法提取的主要是胞外植物多糖。筛选实验结果表明:具有延缓运动疲劳的植物多糖的活性成分可能主要存在于细胞内。

长时间大强度运动时,运动性疲劳的发生与能量消耗、代谢产物的堆积和内环境的改变等因素有关。研究显示,在长时间大强度运动中,糖原的大量耗尽、血糖浓度的降低、乳酸的堆积都能诱发运动性疲劳的发生[4-5]。从本试验各组小鼠游泳力竭时间来看,服用酶法提取木枣多糖JP2小鼠游泳力竭时间较对照组分别提高了17.4%,说明服用一定剂量JP2可明显延长运动疲劳的时间。

肝糖原和肌糖原是运动中重要的供能物质,它的储量大小与疲劳的延缓有直接关系,当大强度的训练时,肝糖原的输出不仅维持血糖的恒定,而且及时弥补肌糖原的消耗,维持运动水平。从实验结果分析,运动前与运动后,服用酶法提取木枣多糖JP2,中、高剂量组小鼠肝糖原和肌糖原的储量都较对照组有显著的提高,表明:JP2可能是通过提高机体糖原储备来延长小鼠力竭时间的。结果也显示:服用不同剂量JP2小鼠肝糖原和肌糖原的恢复速度都较对照组有不同程度的提高。

    正常情况下,机体的血糖浓度保持动态恒定。长时间运动,使肌糖原耗尽,肌肉不断利用血糖供能,导致血糖浓度下降,机体通过肝糖原的释放维持血糖的恒定[6]。本试验力竭游泳模型,造成对照组与低剂量组小鼠血糖浓度显著下降(P<0 .05),血糖浓度的下降,使大脑与红细胞的功能首先受到影响,进而影响运动能力;中剂量与高剂量组小鼠血糖浓度下降不明显,这可能与木枣多糖提高了机体肝糖原和肌糖原的储量有关。从血糖的恢复效果来看,木枣多糖JP2高剂量组较对照组有显著性差异,说明JP2200 mg.kg-1体重的剂量下,对小鼠力竭后血糖的恢复有良好的促进作用。

乳酸是糖酵解的终产物,也是糖异生的底物之一,正常情况下,机体内有一定量的乳酸生成,这些乳酸主要通过有氧氧化与糖异生消除。大强度运动时,乳酸大量生成,造成乳酸堆积,影响运动肌以及机体其它组织和器官的功能,进而导致疲劳的产生[7]。试验结果显示:服用不同剂量木枣多糖JP2使小鼠血乳酸浓度在运动前与运动恢复后都没有明显的影响,但在运动后即刻与运动前相比较,有不同程度的下降,说明:服用一定剂量木枣多糖JP2缓减了游泳小鼠长时间大强度运动中的乳酸堆积的程度。其原因是否是通过增强乳酸脱氢酶活性而使乳酸得以消除,还是通过增强糖异生渠道来降低乳酸的堆积,还有待于进一步研究证明。

4 总结

通过对酶法提取木枣多糖JP2的进一步实验,证实了JP2可能下列途径延长运动时间的:提高机体糖原储备、维持血糖的恒定及降低运动时血乳酸的堆积来延长运动时间,本试验证明了木枣多糖JP2具有抗运动疲劳的作用,此外,木枣产量高,价格低,酶法提取木枣多糖的工艺简单易行[8-9],如把木枣多糖开发成为一种运动补剂,其利用价值较高。

 

参考文献

[1] 杨世平,孙润广.陕北红枣中多糖结构和组分的分析鉴定[J].食品与机械,2005, 21(5):43-44.

[2] 杨云,谢新年,孟江,.酶法提取大枣多糖的研究[J].食品工业科技,2003,24(10):93-95.

[3] 陶占泉,李文辉,何兵.力竭游泳训练后小鼠自由基反应的动态观察[J].南京师大学报:自然科学版, 1998, 21(4):8387.

[4] 王启荣,吕丹云,周未艾,.理气扶正类中药消除大鼠运动性疲劳的骨骼肌组织化学研究[J].中国运动医学杂志,1999,18(4):300-305.

[5] 冯美云主编.运动生物化学[M].北京:人民体育出版社,2000.

[6] Srivastava R, Srimal RC. Modification of Certain Inflammation-induced Biochemical Changes by Curcumin[J]. Indian J Med Res,1985,81(2):215-223.

[7] 冯炜权.乳酸与运动能力 [J]. 中国运动医学杂志,1987,6:157-161,222-224..

[8] 杨世平,孙润广,陈国梁,.陕北红枣中多糖的提取与分离工艺参数优化[J].西北农业学报,2005, 14(4):103-105.

[9] 张 钟,高智谋,钱仁珊. 红枣多糖提取工艺及其理化性质的研究[J].保鲜与加工,2006,1:31-32.

 

 



阅读: 次       
录入:ydslx       

评论 】 【 推荐 】 【 打印 】       
上一篇:运动训练对血象影响初探
下一篇:浅谈“健康体适能”
相关新闻