摘要 目的:从木枣多糖中寻找和筛选抗疲劳组分,探讨其对运动机体的作用机制。方法:用不同方法从木枣中提取得到两种粗多糖,以雄性小鼠为实验对象,采用一次性力竭试验,筛选效果最强组分;又建立递增强度游泳训练模型,对小鼠灌服该多糖溶液,四周后测定血糖、肌糖原、肝糖原、血乳酸等生化指标。结果表明:服用一定剂量酶提木枣多糖能提高肌糖原和肝糖原含量,减少力竭运动后血乳酸的堆积,维持血糖恒定。结论:说明酶法提取木枣多糖能够延缓机体运动性疲劳的产生。
关键词:酶法提取;木枣多糖;游泳;糖代谢;
植物多糖是一种广泛存在于植物中的天然大分子物质,由于其独特的功能,近年来被广泛的应用于临床来提高机体的免疫能力,用于增强机体的抗氧化能力,和调节机体的糖代谢。木枣是枣类中的一大类,也有人称之为红枣或大枣,它主要产于陕西,俗有“陕北大红枣”的美称。由于其适应性强,栽培技术简单,所以被陕北等地广泛种植。木枣中含有丰富的蛋白质、氨基酸、维生素、生物碱、皂甙、矿物质及多糖(Jujube Polysaccharide)等。红枣中的多糖成分可以提高衰老模型小鼠SOD、CAT、GSP-Px活力,对大、小鼠血虚模型、气血双虚模型有较好改善作用,并具有抗溃疡作用[1];大枣多糖具有增强巨噬细胞吞噬功能、促进淋巴细胞转换、抗衰老、补血及保肝的作用[2]。本试验采用游泳模型,研究木枣多糖对小鼠机体糖代谢以及运动能力的影响,为进一步开发与利用陕北木枣、开发新型运动补剂提供理论依据与思路。
1材料和方法
1.1实验材料及动物
木枣购于陕西省吴堡县,采摘期为十月。木枣多糖提取过程在本实验室进行。采用两种常规提取方法:热水浸提法、加纤维素酶提取法,工艺的主要步骤:木枣→破碎过60目筛→80%乙醇除单糖、苷类等干扰成份→渣用热水浸提→离心取上清液,浓缩至小体积→终浓度为80%乙醇沉淀→无水乙醇、丙酮、乙醚洗涤沉淀→冷冻干燥得水提多糖JP1;热水浸提时加一定比例的纤维素酶,其余步骤同前,得酶提多糖JP2。硫酸-苯酚法检测JP1多糖含量为76.4%,JP2多糖含量为82.6%;
试验动物为健康昆明种雄性小鼠160只,两月龄,体重22-26克,从陕西省医药研究所实验动物饲养中心购入,同时购入基本饲养。适应行饲养一周后进行实验。
1.2试验模型与方案
1.2.1木枣多糖筛选模型
两种糖用时配成等浓度的多糖水溶液,随用随配。小鼠随机分为三组:对照组、JP1组、 JP2组,每组10只。JP1组、 JP2组灌服多糖液一周,剂量选择100 mg.kg-1.d-1(按多糖含量计算),对照组同样灌服等体积生理盐水。一周后进行一次性游泳力竭实验,进行筛选。
1.2.2运动模型
选择效果明显的木枣多糖进一步试验,选择100 mg.kg-1.d-1为中剂量,并按倍数关系设定高低两个剂量:50mg.kg-1.d-1、200 mg.kg-1.d-1,小鼠分为4组,每组30只:运动模型对照组、低剂量运动组、中剂量运动组、高剂量运动组。动物饲养室温度20℃-26℃,湿度为43%-50%,光照随同自然光变化,各组自由摄食饮水;每天下午五点灌胃相应的木枣多糖液;运动对照组灌胃相同体积的生理盐水,各组在水池中进行游泳训练,训练模型参照文献[3],并适当改动,每天灌胃后三小时进行游泳,每周训练6天,周末休息,运动量安排见表1;水池长65cm、宽50cm、深50cm,加水泵制造成循环水,温度控制于30-35℃;第四周末,每组随机抽取10只运动前处死测定相关指标,其余小鼠力竭后随机平均分为即刻处死组和恢复3小时组,恢复组力竭完再灌胃相关剂量木枣多糖液,3小时后处死,测定相关指标。力竭实验采用负重方式,即鼠尾系质量为鼠重5%铅丝,强迫游泳至力竭。判断标准为:小鼠沉入水面8s无力游出。立刻捞出记录游泳时间。
表1 游泳小鼠运动量方案 (单位:min)
Table 1 List of Exercise Amount of Mice (Unit: min)
天数 |
第一周 |
第二周 |
第三周 |
第四周 |
第一天 |
10 |
65 |
95 |
120 |
第二天 |
20 |
70 |
100 |
120 |
第三天 |
30 |
75 |
105 |
120 |
第四天 |
40 |
80 |
110 |
120 |
第五天 |
50 |
85 |
115 |
120 |
第六天 |
60 |
90 |
120 |
运动前测定、力竭后测定、恢复测定 |
1.3样品制备与测试方法
血清制备:各组小鼠分别轻度麻醉,眼眶采血,在室温下凝固,然后用离心机离心2号角速度2500-3000rpm.min-1离心15分钟,取血清;用ACE全自动化分析仪(美国)低温测血糖、血乳酸;组织匀浆制备:取股四头肌、肝脏,制备组织匀浆,质量体积比为10%,待测肌糖原和肝糖原。血糖、肌糖原、肝糖原及血乳酸含量采用南京建成生物制剂公司的试剂盒测定,各项操作严格按照试剂盒上的说明进行。
1.4数据处理
用 EXCEL对所测试数据进行处理,结果以平均数±标准差(X±SD)表示,数据进行组间t检验。
2 实验结果
2.1木枣多糖对各组小鼠力竭时间的影响(见表2)
表2 木枣多糖组分对小鼠力竭时间的影响
Table 2 Effect of Jujube Polysaccharide Composition on Exhaust Time of Mice
组别 |
n |
力竭时间(min) |
延长百分率 |
对照组
JP1
JP2 |
10
10
10 |
138.31±13.69
142.66±12.52
162.32±21.42* |
—
3.2%
17.4% |
*:P<0 .05,与对照组相比较.
表2显示:JP2组小鼠力竭时间显著长于运动对照组,延长百分率分别为17.4%,JP1组小鼠力竭时间较运动对照组差别不明显,提示JP2具有提高小鼠运动时间及抗疲劳的作用,可对其进一步进行研究,探讨其抗疲劳的可能机制。
2.2 服用不同剂量JP2对各组小鼠肌糖原、肝糖原含量的影响(见表3)
表3显示:低剂量运动组肌糖原含量在运动后恢复3小时与运动对照组相比较,具有明显的升高,同时低剂量运动组肝糖原在运动前与运动对照组相比较,具有明显的升高,其余情况无统计学意义;但中剂量运动组与高剂量运动组小鼠不管是运动前、运动后即刻、还是运动后3小时恢复,肌糖原、肝糖原含量均显著高于运动对照组,提示木枣多糖在一定剂量下具有提高小鼠糖原储备的作用。
表3 JP2对各组小鼠肌糖原、肝糖原含量的影响
Table 3 Effect of JP2 on Content of muscle sugar and liver sugar of Mice
组别(n=30) |
肌糖原(g/100g) |
肝糖原(g/100g) |
运动前 |
运动即刻 |
运动恢复 |
运动前 |
运动即刻 |
运动恢复 |
对照组 |
0.42±0.14 |
0.38±0.08 |
0.41±0.11 |
1.76±0.15 |
1.54±0.82 |
1.63±0.24 |
低剂量组 |
0.46±0.13 |
0.42±0.11 |
0.45±0.13* |
1.97±0.37* |
1.62±0.45 |
1.77±0.32 |
中剂量组 |
0.51±0.18* |
0.44±0.16* |
0.48±0.06* |
2.16±0.13* |
1.95±0.31* |
2.15±0.24* |
高剂量组 |
0.58±0.11** |
0.46±0.06* |
0.54±0.14* |
2.21±0.29** |
1.97±0.16* |
2.19±0.12** |
*:P<0 .05,与对照组相比较;**: P<0 .01,与对照组相比较.
2.3服用不同剂量JP2对游泳小鼠运动前后糖原储备和恢复的影响(见表4)
表4 JP2对游泳小鼠运动前后糖原储备和恢复的影响
Table 4 Effect of JP2 on Content and recover of sugar about Mice after training
组别 |
糖原增长率(%) |
|
糖原恢复率(mg/100g.min) |
肌糖原 |
肝糖原 |
肌糖原 |
肝糖原 |
对照组 |
0 |
0 |
|
0.17 |
0.5 |
低剂量组 |
9.52 |
11.93 |
|
0.17 |
0.83 |
中剂量组 |
21.43 |
22.73 |
|
0.22 |
1.11 |
高剂量组 |
38.10 |
25.57 |
|
0.44 |
1.22 |
注:糖原储备增长率(%)=(游泳前各剂量组糖原含量-游泳前对照组糖原含量)/游泳前对照组糖原含量.100%;糖原恢复率(mg/100g.min)=(游泳后3小时糖原含量-游泳后即刻糖原含量)/180分钟
表4显示:各加药组肌糖原、肝糖原含量增长率与运动对照组相比较,具有明显的升高,中高剂量运动组肌糖原、肝糖原含量增长率达20%;从糖原恢复率的变化情况来看,各剂量运动组均超过运动对照组。
2.4服用不同剂量JP2对各组游泳小鼠血糖含量的影响(见表5)
表5 JP2对各组小鼠血糖含量的影响 (单位:mmol/L)
Table 5 Effect of JP2 on Content of blood glucose of Mice (Unit: mmol/L)
组别 |
运动前 |
运动即刻 |
运动恢复 |
对照组(n=30) |
5.62±1.32 |
3.86±0.14△ |
4.78±1.24 |
低剂量组(n=30) |
5.89±1.45 |
3.97±0.32△ |
5.06±0.87 |
中剂量组(n=30) |
5.85±0.79 |
4.26±0.13 |
5.15±1.21 |
高剂量组(n=30) |
5.72±1.21 |
4.52±0.34 |
5.27±0.63* |
*:P<0 .05,与对照组相比较;△:P<0 .05,与运动前相比较.
由表5可知: 运动后对照组、低剂量组小鼠血糖较运动前有显著性下降,运动后血糖恢复情况显示,只有高剂量组与对照组有显著性升高的差异;其余各组与运动前、运动后相比较,都没有显著性差异(P>0.05)。
2.5服用不同剂量JP2对游泳小鼠血乳酸含量的影响(见表6)
表6 JP2对各组小鼠血乳酸含量的影响(单位:mmol/L)
Table 6 Influence of JP2 on Content of Blood Lactic Acid of Mice (Unit: mmol/L)
组别 |
运动前(mmol/L) |
运动即刻(mmol/L) |
运动恢复(mmol/L) |
血乳酸恢复速度(mmol/L.min-1) |
对照组 |
2.11±0.65 |
9.31±2.14△△ |
2.62±1.13 |
0.037 |
低剂量组 |
2.02±1.04 |
8.62±1.33*△△ |
2.88±0.51 |
0.039 |
中剂量组 |
2.21±0.74 |
8.25±1.42*△△ |
2.86±1.06 |
0.030 |
高剂量组 |
2.18±0.65 |
8.11±1.62**△△ |
2.52±0.86 |
0.031 |
注:血乳酸指数(mmol/L.min-1)=运动后即刻血乳酸(mmol/L)/运动时间(min)
*:P<0 .05,与对照组相比较;**: P<0 .01,与对照组相比较. △:P<0 .05,与运动前相比较;△△:P<0 .01,与运动前相比较.
表6结果显示:运动后即刻,各组游泳小鼠较运动前血乳酸浓度成呈极显著性增加(P<0 .01);各剂量组小鼠血乳酸浓度较对照组有不同程度的降低(P<0 .05、P<0 .01),各组运动恢复后与运动前的血乳酸浓度对比无显著性差异,各组血乳酸恢复速度之间的对比也无统计学意义。
3 讨论
通过纤维素酶法对木枣多糖进行提取,能充分打碎植物细胞壁,使植物细胞胞内多糖浸出,而水提法提取的主要是胞外植物多糖。筛选实验结果表明:具有延缓运动疲劳的植物多糖的活性成分可能主要存在于细胞内。
长时间大强度运动时,运动性疲劳的发生与能量消耗、代谢产物的堆积和内环境的改变等因素有关。研究显示,在长时间大强度运动中,糖原的大量耗尽、血糖浓度的降低、乳酸的堆积都能诱发运动性疲劳的发生[4-5]。从本试验各组小鼠游泳力竭时间来看,服用酶法提取木枣多糖JP2小鼠游泳力竭时间较对照组分别提高了17.4%,说明服用一定剂量JP2可明显延长运动疲劳的时间。
肝糖原和肌糖原是运动中重要的供能物质,它的储量大小与疲劳的延缓有直接关系,当大强度的训练时,肝糖原的输出不仅维持血糖的恒定,而且及时弥补肌糖原的消耗,维持运动水平。从实验结果分析,运动前与运动后,服用酶法提取木枣多糖JP2,中、高剂量组小鼠肝糖原和肌糖原的储量都较对照组有显著的提高,表明:JP2可能是通过提高机体糖原储备来延长小鼠力竭时间的。结果也显示:服用不同剂量JP2小鼠肝糖原和肌糖原的恢复速度都较对照组有不同程度的提高。
正常情况下,机体的血糖浓度保持动态恒定。长时间运动,使肌糖原耗尽,肌肉不断利用血糖供能,导致血糖浓度下降,机体通过肝糖原的释放维持血糖的恒定[6]。本试验力竭游泳模型,造成对照组与低剂量组小鼠血糖浓度显著下降(P<0 .05),血糖浓度的下降,使大脑与红细胞的功能首先受到影响,进而影响运动能力;中剂量与高剂量组小鼠血糖浓度下降不明显,这可能与木枣多糖提高了机体肝糖原和肌糖原的储量有关。从血糖的恢复效果来看,木枣多糖JP2高剂量组较对照组有显著性差异,说明JP2在200 mg.kg-1体重的剂量下,对小鼠力竭后血糖的恢复有良好的促进作用。
乳酸是糖酵解的终产物,也是糖异生的底物之一,正常情况下,机体内有一定量的乳酸生成,这些乳酸主要通过有氧氧化与糖异生消除。大强度运动时,乳酸大量生成,造成乳酸堆积,影响运动肌以及机体其它组织和器官的功能,进而导致疲劳的产生[7]。试验结果显示:服用不同剂量木枣多糖JP2使小鼠血乳酸浓度在运动前与运动恢复后都没有明显的影响,但在运动后即刻与运动前相比较,有不同程度的下降,说明:服用一定剂量木枣多糖JP2缓减了游泳小鼠长时间大强度运动中的乳酸堆积的程度。其原因是否是通过增强乳酸脱氢酶活性而使乳酸得以消除,还是通过增强糖异生渠道来降低乳酸的堆积,还有待于进一步研究证明。
4 总结
通过对酶法提取木枣多糖JP2的进一步实验,证实了JP2可能下列途径延长运动时间的:提高机体糖原储备、维持血糖的恒定及降低运动时血乳酸的堆积来延长运动时间,本试验证明了木枣多糖JP2具有抗运动疲劳的作用,此外,木枣产量高,价格低,酶法提取木枣多糖的工艺简单易行[8-9],如把木枣多糖开发成为一种运动补剂,其利用价值较高。
参考文献
[1] 杨世平,孙润广.陕北红枣中多糖结构和组分的分析鉴定[J].食品与机械,2005, 21(5):43-44.
[2] 杨云,谢新年,孟江,等.酶法提取大枣多糖的研究[J].食品工业科技,2003,24(10):93-95.
[3] 陶占泉,李文辉,何兵.力竭游泳训练后小鼠自由基反应的动态观察[J].南京师大学报:自然科学版, 1998, 21(4):83-87.
[4] 王启荣,吕丹云,周未艾,等.理气扶正类中药消除大鼠运动性疲劳的骨骼肌组织化学研究[J].中国运动医学杂志,1999,18(4):300-305.
[5] 冯美云主编.运动生物化学[M].北京:人民体育出版社,2000.
[6] Srivastava R, Srimal RC. Modification of Certain Inflammation-induced Biochemical Changes by Curcumin[J]. Indian J Med Res,1985,81(2):215-223.
[7] 冯炜权.乳酸与运动能力 [J]. 中国运动医学杂志,1987,6:157-161,222-224..
[8] 杨世平,孙润广,陈国梁,等.陕北红枣中多糖的提取与分离工艺参数优化[J].西北农业学报,2005, 14(4):103-105.
[9] 张 钟,高智谋,钱仁珊. 红枣多糖提取工艺及其理化性质的研究[J].保鲜与加工,2006,1:31-32.